4mLDNA超滤离心管(30-50KD)

4MLDNA超滤离心管(30-50KD)

 数量：大量
规格：1个

4MLDNA超滤离心管(30-50KD)添加DMSO或者使用修饰化的碱基以及使用LA－Taq来扩增PCR这些在我也都做过，不过都正如你所说，都是直接扩增基因组或cDNA.

而高GC含量影响反转录也是肯定的，因为高GC肯定容易形成复杂的二级结构，这些可以参见《分子克隆》。“我至今没有听说高GC含量会不利于逆转录，有一个证据就是在FMDV基因组RNA中有长达500bp的GC tail，4MLDNA超滤离心管(30-50KD)这个病毒的全基因组一样被测序出来”，但这并不能说明逆转录没有遇到麻烦，人家不会告诉你经过怎样的过程才测出来的。比如，对高GC含量的模板测序会比较困难吧，可是你到网上搜一搜，高GC含量的区域多的是，不然的话我也不无法预测我的基因5‘端有一个高GC区了是吗？我们不能因此就推出GC含量高不影响测序吧？我自己的例子也证明了高GC含量影响逆转录的，因为无论是筛库还是RACE，都是只能拿到此区域的相邻3’区，而可以肯定的是，所得到的一定不是全长，可见肯定是由于逆转录不过去。在搜一下文献，可以得出我的结论的。所以我现在的困难在于反转录，而不是PCR。

4MLDNA超滤离心管(30-50KD)首先检查一下你的基因片断大小以及回收量（应该不是很大，所以回收的量很可能太少），太小的片断不容易连，如果是这样建议使用好的感受态，或增大回收的量。其次看一下你回收时所用的紫外，波长是否小于314nm，如果是建议使用314以上的，并且操作时间尽量减短。第三，建议将回收产物普通Taq加A，不需回收，再连一次。，检查一下感受态。还有，如果T－easy存放时间过长，建议使用新的。 

难度不出很大。4MLDNA超滤离心管(30-50KD)如果诱变的位点在基因中间，你可以用一个突变引物先引入突变；然后用这个突变体做一侧的引物（大引物），与另一个引物一起，以野生型基因为模板扩增。我们用这种方法做出来多个突变体。

 90101-50 大片段DNA分子量标准 50ug

70605-30 miRNA电泳分子量标准 30次

沉淀剂及助沉剂

3120-0.1 微量RNA助沉剂 0.1ml

3621-0.1 微量DNA助沉剂 0.1ml

50903-10 微量核酸沉淀剂 10ml

60402-30 超快非醇核酸沉淀剂 30次

60402-100 超快非醇核酸沉淀剂 100次

DNA纯化回收

60202-50 柱式DNAback 50次

60202-100 柱式DNAback 100次

90506-50 胶回收及PCR片段纯化两用试剂盒 50次

90506-100 胶回收及PCR片段纯化两用试剂盒 100次

90211-50 低载量PCR片段纯化试剂盒 50次

90211-100 低载量PCR片段纯化试剂盒 100次

90212-50 高载量PCR片段纯化试剂盒 50次

90212-100 高载量PCR片段纯化试剂盒 100次

100201-5 海量PCR片段纯化试剂盒 5次