建议上样量 |  |
3-5 µl/次。可根据上样孔大小选择合适上样量 |
Marker已预混上样缓冲液,可直接进行电泳分析 |
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建议电泳条件 |
1 %琼脂糖凝胶,8 cm 凝胶,1×TAE,7 V/cm,45 min |
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保存 |
常温保存 1 年,长期保存请置于-20 ℃ |
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各条带含量 |
指示带 100 ng/5 µl |
非指示带 40 ng/5 µl |
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条带组成(bp) |
100、200、300、400、500、700、1,000、1,500、2,000、3,000、4,000、5,000、6,000、8,000、10,000 |
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产品说明 |
由15条双链线状DNA片段混合而成,指示带为500 bp和3000 bp,便于电泳后观察。每 |
条带都通过严格的物理定量可用以测定目的片段的大小和含量 。 |
产品浓度为 144 ng/µl。 |
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注意事项 |
● 请选择高品质的琼脂糖,并及时更换电泳缓冲液。溶胶不充分会导致因胶浓度不均而出现的电泳条 |
带异常;陈旧的缓冲液离子缓冲能力不足,可能导致 Marker 条带泳动缓慢,并伴随弥散现象。 |
● 胶浓度、电压、电泳时间是影响 DNA 片段分离的主要因素,为获得电泳分离效果,建议按照 |
推荐的条件进行电泳分析。 |
● 上样量的多少取决于样品的浓度与加样孔的大小。由于 Marker 的浓度较高,通常对于 3×0.75 |
的小加样孔,建议上样 2-3 μl,对于 5 ×1 的大加样孔,建议上样 5 μl。过多的上样量可能导致条带 |
相互挤压,分散不充分,跑不开,影响条带分离效果。 |
● 使用本产品进行定量分析时,可将目的片段做梯度上样,选择亮度与 Marker 条带Z为接近的片段 |
进行分析。 |
● 进行 PAGE 胶电泳分析时,建议取 0.5-1 μl Marker 并用 1×loading 稀释到适当体积上样。 |