1. 平板法(玻片法)
(1) 加1滴抗D试剂于玻片上。
(2) 再加1滴35-45%的被检红细胞悬液。该红细胞悬液可以是盐水悬液,也可以是悬浮于自身血浆或血清中的红细胞。
(3) 在圆形的玻片区域中混匀,(直径约为20mm大小),前后缓慢摇晃玻片。2分钟左右肉眼判读结果。不要将试剂的干燥与凝集相混淆。
(4) 如果呈阴性,需用试管法重做一遍试验。
2. 试管法
(1) 加1滴抗D试剂于一支预先标记好的试管中(75×12mm或75×10mm)。
(2) 再加1滴约3-5%的被检红细胞悬液于试管中。混匀。
(3) 离心,速度和时间可选择以下二种之一: a) 转速1000rpm,时间1分钟; b) 转速3400rpm,时间15秒。
(4) 检查是否有溶血(溶血可能是阳性结果,或者是细菌污染),然后轻轻摇晃,使细胞再悬浮起来。
(5) 观察凝集状况,并立即记录结果。必要时可借助显微镜。
(6) 若是阴性结果,需在37℃孵育15-30分钟,然后再离心观察结果。结果若呈阴性需进一步确认是否是弱D。
3. 微量板法(U型板)
(1) 加1滴抗D试剂于U型底的微孔中。
(2) 再在微孔中加1滴约3-5%的被检红细胞悬液,细胞悬液需事先制备于生理盐水中。
(3) 用机械的方法将U型板混匀。
(4) 用板式离心机离心:2000rpm,时间30秒。不同的离心机、不同的微量板所需要的离心条件有所区别,正确实验的结果需要适当的离心,使反应板产生清晰的细胞扣及透亮的上清液。 (5) 检测溶血情况(溶血可能是阳性结果,或者是细菌污染)。