一. 样品的RNA抽提(Trizol,Invitrogen)
1、样本处理
1)培养细胞:收获细胞 1-5×10 7 ,移入 1.5ml 离心管中,加入 1ml Trizol ,混匀,室温静置 5min。
2)组织:每50 - 100mg组织样品,用液氮研磨成粉末,加入1 ml的TRIZOL试剂,混匀,室温静置 5min。
2、两相分离
每1 ml的TRIZOL试剂匀浆的样品中加入0.2 ml的氯仿,盖紧管盖,剧烈振荡管体,室温静置 5min。4°C下12,000 ×g离心15分钟。离心后混合液体将分为下层的红色酚氯仿相,中间层核上层的无色的水相。RNA全部被分配于水相中。水相的体积大约使匀浆时加入的TRIZOL试剂的60%。
3、RNA沉淀
将水相转移到新离心管中。水相与异丙醇混合以沉淀其中的RNA,加入异丙醇的量为每个样品匀浆时加入1 ml TRIZOL试剂的此时加0.5 ml的异丙醇。混匀后15到30°C孵育10分钟后,于4°C 12,000 ×g离心10分钟。此时离心前不可见的RNA沉淀将在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。
4、RNA清洗
移去上清液,每1 ml TRIZOL试剂匀浆的样品中加入至少1 ml的75%乙醇,清洗RNA沉淀。振荡后,4°C 7,500 ×g离心5分钟。
5、重新溶解RNA沉淀
去除乙醇溶液,空气中干燥RNA沉淀5 - 10分钟,切勿真空离心干燥。注意RNA沉淀不要完全干燥,否则将大大降低RNA的可溶性。部分溶解的RNA样品A260 / 280比值将小于1.6。溶解RNA时,先加入无RNA酶的水用枪反复吹打几次,然后55到60°C孵育10分钟。获得的RNA溶液保存于- 70°C。
二. RNA浓度与纯度测定
取1μlRNA样品稀释100倍后测定RNA浓度及OD260、OD280。纯的RNAOD260/280在1.8~2.0之间。样品RNA浓度计算公式为:A260 X 稀释倍数×40 ng/ul。
三. RT(PrimeScript® RT reagent Kit Perfect Real Time,Takara)
1、按下列组份配制RT反应液
5×PrimeScript Buffer | 2 μl |
PrimeScript® RT Enzyme Mix I | 0.5μl |
Oligo dT Primer(50 μM)*1 | 0.5μl |
Random 6 mers(100 μM)*1 | 0.5μl |
Total RNA | 0.5ng |
RNase Free dH2O | Up to 10μl |
2、反转录反应条件如下: 37℃ 15 min,85℃ 5 sec。
3、反应结束后,将其放在冰上待用或-20℃保存。
四. qPCR(SYBR Premix Ex Taq,Takara)
1、按下列组份分别配制Realtime PCR反应体系。
SYBR Premix Ex Taq | 12.5 μl |
PCR Forward Primer(10 μM) | 0.5 μl |
PCR Reverse Primer(10 μM | 0.5 μl |
DNA模板 | 1.0 μl |
dH2O(灭菌蒸馏水 | 10.5 μl |
Total | 25μl |
轻弹管底将溶液混合,5000 rpm短暂离心。
2、步骤1配置的PCR反应溶液置于Realtime PCR仪上进行PCR反应。
95℃,5min;40个PCR循环(95℃,10秒;60℃,20秒;72℃,20秒;79℃,20秒(收集荧光))。
为了建立PCR产物的熔解曲线,扩增反应结束后,(95℃,2min;60℃,20秒;72℃,20秒;99℃,15秒,并从72℃缓慢加热到99℃(8分钟)。
3、结果与计算
各样品的目的mRNA和内参(GAPDH)分别进行Realtime PCR反应。数据采用2 - △△ CT法进行分析