瑞士 Cytosurge 多功能单细胞显微操作系统 FluidFM BOT_详细资料

产品信息

货号： FluidFM BOT

瑞士 Cytosurge FluidFM BOT
多功能单细胞显微操作系统

产品简介：

多功能单细胞显微操作系统——FluidFM BOT，是将原子力系统、微流控系统、细胞培养系统为一体的单细胞操作系统。主要功能包括单细胞注射、单细胞提取以及单细胞分离。

深度自动化设计 一体
无需购买额外设备简易
操作只需轻点鼠标可控
所有变量均可
通过软件操纵

单细胞注射
无损注入的将不同类型的物质准确注入到细胞质或者细胞核。
量化的fL级别注射。
注射后细胞存活率>95%。
每小时可注射>100个细胞。

单细胞提取
在不改变细胞生存环境的情况下实现单个细胞的活细胞提取。
可单独提取细胞质或细胞核，或者同时提取提取细胞质和细胞核。
提取后细胞仍可存活。

细胞分离
无论悬浮或者贴壁细胞均可分离或者分选。整个过程对细胞无损伤。

点打印
纳米精度的高密度点打印能够快速建立使用诸如蛋白、DNA等物质构成生物感应列阵。

纳米光刻技术
打印纳米精度的各种生物分子所构成的复杂图案。

多功能单细胞显微操作系统FluidFM BOT打开了传统单细胞实验手段无法触及领域的大门。突破了单细胞研究、药物开发、细胞系开发中的障碍，让细胞膜不再成为阻碍单细胞研究的壁垒。
多功能单细胞显微操作系统FluidFM BOT浓缩了FluidFM科技的全部精华，尤其是在自动化程度和操作速度上的提高。它不仅保留了产品在生物学上的能力。更能够将这些功能进行组合来创造更加GX、便捷全新试验方法。

肝细胞的
微量注射

HeLa细胞的
微量提取

CHO细胞的
单细胞分离

纳米光刻
DAPI染料

单细胞注射——快速、JZ、低损伤

更优的CRISPR-Cas转染方式：
能够进行高速、GX地将CRISPR-Cas复合物注入细胞，帮助您克服对于传统方式极难转染的细胞基因编辑问题。

提高质粒的转染效率：
相比于传统的转染方式，FluidFM更加温和、快速，对细胞的损伤更小。

贴壁细胞均可注射：
对于注射细胞的种类，本产品并没有太多的限制，即使像心肌细胞这样的注射难度很高的细胞也能够胜任。

JZ注入体积计算：
通过比对注入荧光分子物质的荧光强度JZ计算注入荧光分子的体积。

部分发表文献：
O.Guillaume-Gentil, E.Potthoff, D.Ossola, et al. Force-controlled fluidic injection into single cell nuclei.(2013)Small,9(11),1904−1907. doi:10.1002/ smll.201202276A.
Meister, M. Gabi, P.Behr, et al. FluidFM: Combining atomic force microscopy and nanofluidics in a universal liquid delivery system for single cell applications and beyond.(2009) Nano Letters, 9(6), 2501−2507. doi:10.1021/nl901384x

单细胞提取——微量、低创、JZ

活细胞提取
从活细胞中直接提取内容物，并且提取后细胞仍可存活。

电镜成像
相比于传统的裂解方式，FluidFM BOT提取的样本更为干净，可以得到很好地电镜图像。

mRNA、酶活力的检测
FluidFM BOT提取的样本也可以直接用于酶活力的测定或mRNA的检测。

单细胞质谱分析
FluidFM BOT提取样本也可应用于单细胞代谢组学样本的质谱分析。

部分发表文献：
O. Guillaume-Gentil, T. Rey, P. Kiefer, A.J. Ibáñez, R. Steinhoff, R. Brönnimann, L. Dorwling-Carter, H. Zambelli, R. Zenobi & J.A. Vorholt. Single-Cell Mass Spectrometry of Metabolites Extracted from Live Cells by Fluidic Force Microscopy. (May 2017) Anal Chem., 89(9), 5017-5023. doi:10.1021/acs.analchem.7b00367
O. Guillaume-Gentil, R.V. Grindberg, R. Kooger, L. Dorwling-Carter, V. Martinez, D. Ossola, M. Pilhofer, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Tunable Single-Cell Extraction for Molecular Analyses. (Jul 2016) Cell, 166(2), 506-516. doi: 10.1016/j. cell.2016.06.025.

单细胞分离——直观、简单、低损

FluidFM®
一气呵成的细胞分离过程
使用FluidFM BOT分离CHO细胞，仅仅点击几次鼠标，单个细胞便JZ的完成了转移。

小样本细胞群分离的选择
对于细胞数不足以使用流式细胞仪分选时，FluidFM BOT很好的填补这个空白。

部分发表文献：
O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & J.A. Vorholt.Isolation of single mammalian cells from adherent cultures by fluidic force microscopy. (2014) Lab on a chip, 14(2), 402-414. doi:10.1039/c3lc51174j
P. Stiefel, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Isolation of optically targeted single bacteria by application of fluidic force microscopy to aerobic anoxygenic phototrophs from the phyllosphere. (2013) Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895-4905. doi:10.1128/AEM.01087-13P.
Dörig, P. Stiefel, P. Behr, et al. Force-controlled spatial manipulation of viable mammalian cells and micro-organisms by means of FluidFM technology.(2010) Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1-3. doi:10.1063/1.3462979

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	单细胞注射无损注入的将不同类型的物质准确注入到细胞质或者细胞核。量化的fL级别注射。注射后细胞存活率>95%。每小时可注射>100个细胞。
	单细胞提取在不改变细胞生存环境的情况下实现单个细胞的活细胞提取。可单独提取细胞质或细胞核，或者同时提取提取细胞质和细胞核。提取后细胞仍可存活。
	细胞分离无论悬浮或者贴壁细胞均可分离或者分选。整个过程对细胞无损伤。
	点打印纳米精度的高密度点打印能够快速建立使用诸如蛋白、DNA等物质构成生物感应列阵。
	纳米光刻技术打印纳米精度的各种生物分子所构成的复杂图案。

	更优的CRISPR-Cas转染方式：能够进行高速、GX地将CRISPR-Cas复合物注入细胞，帮助您克服对于传统方式极难转染的细胞基因编辑问题。
	提高质粒的转染效率：相比于传统的转染方式，FluidFM更加温和、快速，对细胞的损伤更小。
	贴壁细胞均可注射：对于注射细胞的种类，本产品并没有太多的限制，即使像心肌细胞这样的注射难度很高的细胞也能够胜任。
	JZ注入体积计算：通过比对注入荧光分子物质的荧光强度JZ计算注入荧光分子的体积。
部分发表文献： O.Guillaume-Gentil, E.Potthoff, D.Ossola, et al. Force-controlled fluidic injection into single cell nuclei.(2013)Small,9(11),1904−1907. doi:10.1002/ smll.201202276A. Meister, M. Gabi, P.Behr, et al. FluidFM: Combining atomic force microscopy and nanofluidics in a universal liquid delivery system for single cell applications and beyond.(2009) Nano Letters, 9(6), 2501−2507. doi:10.1021/nl901384x

	活细胞提取从活细胞中直接提取内容物，并且提取后细胞仍可存活。
	电镜成像相比于传统的裂解方式，FluidFM BOT提取的样本更为干净，可以得到很好地电镜图像。
	mRNA、酶活力的检测 FluidFM BOT提取的样本也可以直接用于酶活力的测定或mRNA的检测。
	单细胞质谱分析 FluidFM BOT提取样本也可应用于单细胞代谢组学样本的质谱分析。
部分发表文献： O. Guillaume-Gentil, T. Rey, P. Kiefer, A.J. Ibáñez, R. Steinhoff, R. Brönnimann, L. Dorwling-Carter, H. Zambelli, R. Zenobi & J.A. Vorholt. Single-Cell Mass Spectrometry of Metabolites Extracted from Live Cells by Fluidic Force Microscopy. (May 2017) Anal Chem., 89(9), 5017-5023. doi:10.1021/acs.analchem.7b00367 O. Guillaume-Gentil, R.V. Grindberg, R. Kooger, L. Dorwling-Carter, V. Martinez, D. Ossola, M. Pilhofer, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Tunable Single-Cell Extraction for Molecular Analyses. (Jul 2016) Cell, 166(2), 506-516. doi: 10.1016/j. cell.2016.06.025.

			FluidFM® 一气呵成的细胞分离过程使用FluidFM BOT分离CHO细胞，仅仅点击几次鼠标，单个细胞便JZ的完成了转移。
			小样本细胞群分离的选择对于细胞数不足以使用流式细胞仪分选时，FluidFM BOT很好的填补这个空白。
部分发表文献： O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & J.A. Vorholt.Isolation of single mammalian cells from adherent cultures by fluidic force microscopy. (2014) Lab on a chip, 14(2), 402-414. doi:10.1039/c3lc51174j P. Stiefel, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Isolation of optically targeted single bacteria by application of fluidic force microscopy to aerobic anoxygenic phototrophs from the phyllosphere. (2013) Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895-4905. doi:10.1128/AEM.01087-13P. Dörig, P. Stiefel, P. Behr, et al. Force-controlled spatial manipulation of viable mammalian cells and micro-organisms by means of FluidFM technology.(2010) Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1-3. doi:10.1063/1.3462979