GelRed质检电泳核酸染料 0.5ml 无毒可替EB GelRed Biotium M1003

Super GelRed（10,000×水溶液）

      Super GelRed是一种高灵敏、低毒性和超安全的荧光核酸凝胶染色试剂。它可替代溴化乙锭（EtBr，EB），并且远高于EB的灵敏度，同时不需要脱色。由于Super GelRed和EB有相同的光谱特性，因此用它替代EB时不需要更换成像系统。
产品特点:
● 无毒性：Super GelRed独特的油性和大分子量特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内，艾姆斯氏试验结果也表明，该染料的诱变性远小于EB。其水溶染色剂通过美国环保局安全认定，废弃物可直接倒入下水道，而不会造成任何环境污染。
● 灵敏度高：适用于各种大小片段的电泳染色，对核酸迁移的影响小于SYBR Green I，样品荧光信号强，背景信号低。
● 稳定性高：适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶；室温下在酸或碱缓冲液中极其稳定，耐光性强。
● 操作简单：EB一样，与在预制胶和电泳过程中染料不降解；而电泳后染色过程也只需30分钟且无需脱色或冲洗，即可直接用紫外凝胶透射仪观察。
● 适用范围广：可选择电泳前染色（胶染法）或电泳后染色（泡染法）；适用于琼脂糖凝胶 或聚丙烯xian胺凝胶电泳；可用于dsDNA、ssDNA或RNA染色。
● 与EB有相同的光谱特性，无需改变滤光片及观察装置：标准的EB滤光片或SYBR滤光片都适用，使用与观察EB相同的普通紫外凝胶透射仪观察即可，在300nm紫外光附近可得到ZJ激发。但是Super GelRed不能被488nm氩离子激光器或相似波长的可见光完全激发，因此不推荐使用此类激发装置的成像系统。
 
使用方法:
1．胶染法（用法同EB）
（1）制胶时加入Super GelRed核酸染料（例如：每50mL琼脂糖溶液中加入5μL Super GelRed 10,000×储液，以此比例类推）。
（2）按照常规方法进行电泳。
注意事项：
此方法染色染料用量相对较少，500μL染料大约可以做100块50mL的胶。
由于Super GelRed具有良好的热稳定性，可以在热的琼脂糖溶液中直接添加，而不需要等待溶液冷却。摇晃，振荡或者翻转以保证染料充分混匀。也可以选择将Super GelRed储液加到琼脂糖粉末和电泳缓冲液中，然后用微波炉或其他常用方式加热以制备琼脂糖凝胶。Super GelRed兼容所有常用的电泳缓冲溶液。
含有染料的预制凝胶溶液可以大量制备，并长期保存直到使用。
此方法不适合预制聚丙烯xian胺凝胶，对于聚丙烯xian胺凝胶请使用泡染法。
2．泡染法
（1）按照常规方法进行电泳。
（2）用H2O将Super GelRed 10,000×储液稀释约3,300倍到0.1M NaCl中，制成3×染色液。（例如将15μL Super GelRed 10,000×储液和5mL 1M NaCl加到45mL H2O中）。
（3）将凝胶小心地放入合适的容器中，如聚丙烯容器中。缓慢加入足量的3×染色液浸没凝胶。室温振荡染色30min左右，ZJ染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有不同。对于含3.5～10％丙烯xian胺的凝胶，染色时间通常介于30min到1h，并随丙烯xian胺含量增加而延长。
注意事项：
用泡染法染色时，染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。
3×Super GelRed染色液可以大量制备，在室温下避光保存直至用完。
注：1、如果总是看到条带弥散或分离不理想，建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。
2、如果染色后问题依旧存在，则说明问题与染料无关，请尝试：降低琼脂糖浓度、选用更长的凝胶、延长凝胶时间以保证边缘清晰、改进上样技巧或选择泡染法染色。

 
Super GelRed和EtBr实验对比图
Super GelRed和EtBr在TBE缓冲液配制的1%琼脂糖凝胶电泳后，胶染法染色结果比较。分别使用Invitrogen 1Kb Plus DNA Ladder（左到右200、100、50、25ng）上样，凝胶成像使用300nm激发的紫外凝胶成像系统。

安全性报告
SYBR Safe、SYBR Green、Super GelGreen和Super GelRed细胞膜通透性实验
用SYBR Safe、SYBR Green、Super GelGreen和Super GelRed染料，37℃分别孵育Hela细胞5分钟(A)和30分钟(B)。在同等实验条件下，SYBR Safe和SYBR Green能够迅速渗透细胞膜并染色细胞中的DNA，而Super GelGreen和Super GelRed无法穿透活细胞的细胞膜，对实验者而言，Super GelRed更加安全可靠。