产品信息产品名称:人羊膜间充质干细胞成脂分化试剂盒
货号:CHEM-200011
批号:见包装
试剂清单:
序号 | 名称 | 数量 | 货号 |
A | 人羊膜间充质干细胞成脂分化基础培养基A | 1 | CHEM-200011-A |
B | 人羊膜间充质干细胞成脂分化血清 | 2 | CHEM-200011-B |
C | 双抗 | 2 | CHEM-200011-C |
D | 胰岛素 | 2 | CHEM-200011-D |
E | 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 | 1 | CHEM-200011-E |
F | 罗格列酮 | 1 | CHEM-200011-F |
G | 地塞米松 | 1 | CHEM-200011-G |
H | 人羊膜间充质干细胞成脂分化基础培养基B | 1 | CHEM-200011-H |
I | 油红O染色液(储液) | 1 | CHEM-200011-I |
J | 明胶溶液 | 1 | CHEM-100001-J |
存储与有效期:
A、D、H、I、J液于2-8 ℃避光保存,其余溶液于-20 ℃避光保存。所有组分均需要避免反复冻融及复温,各组分在所需要的温度下有效期为1年,配制完成的完全培养基于2-8 ℃保存,有效期为1个月。
产品介绍人羊膜间充质干细胞(hMSC)来源于胚外中胚层,表达多种胚性标志物,被认为是较为原始的间充质干细胞种类,具有多向分化的潜能,体外在一定条件下可以诱导分化为羊膜细胞、成骨细胞、成软骨细胞。2006年国际细胞ZL协会(ISCT)确定此三项检测指标是MSC鉴定的必检项目,目前以MSC为基础的研究报道均会对该三个指标进行鉴定。
为方便科研用户鉴定MSC的分化能力,麒盟干细胞研究ZX精心优化hMSC成脂诱导分化试剂盒,其中包括成脂诱导培养体系和鉴定所需要的染色液,让用户可以稳定有效地鉴定hMSC的分化潜能。该试剂盒提供的实验方法为常规鉴定方法,用于鉴定hMSC是否具有成骨分化能力。除此以外,试剂盒的诱导培养基还可用于诱导分化过程中的其他检测,如mRNA检测、lncRNA检测、microRNA检测、蛋白表达检测、免疫组化检测等。但若用于免疫荧光检测需注意脂肪颗粒导致的自发荧光或遮光问题。
本产品仅适用于科研。
操作方法实验准备² 试剂配制:
2-8 ℃冰箱中过夜溶解B液一支。
注意:解冻后的血清有时会出现沉淀,这些沉淀不影响血清的质量,不必做过滤等处理。诱导液A:室温融化C、E、F、G溶液各一支,将融化的溶液加入A液中,然后将B、D液加入A液中,晃动培养基使其充分混匀,配制成诱导液A。
诱导液B:将B、D液加入H液中,晃动培养基使其充分混匀,配置成诱导液B。
油红O染液(工作液):取油红O储液,与蒸馏水以3:2的比例混合均匀,中性滤纸过滤,即配制成了油红O染液(工作液)。
注意:溶液溶解后旋涡混匀、1000 g短时离心以使溶液集中于管底。将管内溶液加入A/H液后,吸取A/H液洗涤溶液瓶两次,将洗涤液加入A/H液中。所有液体混合成诱导完全培养基后必须充分混匀,2-8 ℃保存。E液较难溶解,需提前复温,反复摇动,在加入A液前须保证完全溶解。诱导液B可在需要时现配。整个过程需无菌操作,适当以75%酒精擦拭表面。² 培养皿处理:
加适量明胶溶液到培养器皿中,轻轻摇动使其覆盖整个培养器皿底面,室温静置30-60分钟。弃去明胶溶液,室温晾干。
注意:本试剂盒建议使用六孔板操作,每孔加明胶溶液1 ml,使用其他培养器皿时需考虑实验结果的稳定性。整个过程需在超净工作台中操作,避免污染。² 自备试剂:
l 消化液(0.25%Trypsin-0.04%EDTA)
l 磷酸盐缓冲液(DPBS)
l hMSC完全培养基
l 4%中性固定溶液
注意:若hMSC完全培养基不含血清,则需要准备胰酶YZ剂。hMSC消化极易过度,建议稀释消化液一倍,且严格控制消化时间。操作步骤1. 准备所需诱导分化的hMSC,当细胞融合达85%左右时,用消化液消化细胞,并用hMSC完全培养基重悬。
2. 按照3×10
4 cells/cm
2的密度将细胞接种于已明胶处理的六孔板中,每孔hMSC完全培养基2 ml,37℃、5%CO
2培养箱中培养。
注意:细胞密度为该试剂盒的标准密度,若修改细胞接种密度则需要考虑实验结果的稳定性。3. 当细胞融合达80%时,弃去原培养上清,添加诱导液A 2 ml/well,37℃、5%CO
2培养箱中培养。
注意:成脂诱导后细胞易脱壁,换液时完全培养基必须经37 ℃复温。添加培养基时动作要轻柔,避免吹起细胞。4. 诱导培养72h后弃去原培养上清,添加诱导液B2 ml/well,37℃、5%CO
2培养箱中培养。
5. 诱导培养24h后弃去原培养上清,添加诱导液A 2 ml/well,37℃、5%CO
2培养箱中培养。
6. 重复步骤4、5约3-5次,待细胞内出现明显脂滴时更换为诱导液B继续培养。
7. 每2天更换新鲜诱导液B,继续培养至脂滴足够大时培养结束。
注意:换液时诱导液必须经过复温,否则影响诱导效果和可能导致细胞脱壁。根据实验需要选择培养结束时间,若成脂面积过大或脂滴过大导致连成片则不利于结果的呈现,建议提前终止。8. 诱导培养结束时,弃去培养上清,DPBS洗细胞两次,4%中性固定溶液2 ml/well室温固定细胞20分钟。
注意:培养结束时或中途可以选择其他检测方法,如基因表达检测等,若采用自己拟定的检测方法则后续方案需要自己拟定。9. 弃去固定液,DPBS洗2次,加入油红O染液1 ml/well染色15分钟。
注意:该步骤适用于鉴定成脂能力,若出现脂滴(脂肪细胞)则会呈现红色着色。若需要得到美观的图片,则染色时间需自己掌握。10. 弃去油红O染液,DPBS洗3次。
11. 显微镜下观察并拍照。
12.
结果判定:按照程序操作完毕,低倍镜下观察可见大面积红色着色点,20倍和40倍镜下可观察到红色球形在细胞内的情况,此红色着色球为脂滴,说明实验所用的hMSC具有成脂能力。否则,所使用的hMSC无成脂能力。
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温馨提示:不可用于临床ZL。 |
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