PriCells: 正常小鼠前脂肪细胞的培养
实验材料:
1. 细胞来源:8—12天龄的小鼠;
2. 清洗液:不含Ca 2+和Mg 2+的1×PBS,添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素,pH7.4;
3. 消化液:0.3%胶原酶溶液,含4%牛血清白蛋白。用Hanks液配制;
4. DW培养液:DMEM和WAJC404培养液按1:1(V/V)混合,添加100IU/ml青霉素、50μg/ml链霉素;
5. 培养液a:DW培养液,10%胎牛血清;
6. 培养液b:DW培养液,补充胰岛素10μg/ml、转铁蛋白10μg/ml、成纤维细胞生长因子(FGF)10ng/ml和高密度脂蛋白(HDL)溶液5μl/ml;
7. 高密度脂蛋白(HDL)溶液:含蛋白质18mg/ml和胆固醇10mg/ml;
8. 地塞米松:工作浓度为10 -7mol/L;
9. 筛网:孔径分别为250μm与80μm的尼龙网筛;
实验方法:
1. 取材;
1) 取8—12天龄的小鼠,窒息处死后,置于冰块上;
2) 在无菌条件下迅速切取腹股沟的脂肪垫,放入PBS液中;
3) 清除脂肪垫中的大血管和结缔组织,洗净血污。称取脂肪垫的重量;
2. 分离细胞;
1) 将脂肪垫剪成1mm 3左右的小块,转入50ml锥形离心管中;
2) 每0.1g组织块加入3—4ml消化液。在37℃水浴摇床上以60r/min的转速轻微振荡,消化1h。其间每隔10min取出离心管,摇动,使组织块与消化液充分混匀;
3) 消化完后,用吸管反复吹打消化液,分散组织块,制成细胞悬液;
4) 用孔径为250μm的尼龙网筛过滤细胞悬液,除去未分散的组织块,收集滤液。将滤过液再用孔径为80μm的尼龙网筛过滤,除去大部分成熟脂肪细胞,收集滤液;
5) 将得到的滤液离心(700g,7—10min)。吸弃漂浮的脂肪细胞和消化液;
6) 用培养液a清洗细胞,离心(700g,7min)。将细胞团制成悬液,再离心。,将细胞沉淀用培养液a重新制成细胞悬液;
3. 原代培养;
1) 用培养液a调节细胞密度。将细胞以1.5×10 4个/cm 2的密度接种于培养板中;
2) 24h后,用DW培养液彻底清洗细胞,除去培养物中残留的胎牛血清和未贴壁的细胞(主要为红细胞);
3) 换入培养液b,在37℃、5%CO 2培养箱中培养。以后用培养液b维持培养。每3d换液一次;
4) 在细胞汇合成片后,继续培养;或于细胞汇合成片后第五天,在培养液b中加入10 -7mol/L地塞米松,继续培养;
5) 培养至出现漂浮细胞时,即可收货细胞,进行鉴定;
PriCells提供:
1. 各种原代细胞特制基础培养基;
2. 各种原代细胞培养特制添加剂;
3. 原代细胞分离试剂盒;
4. 原代细胞鉴定试剂盒;
5. 原代细胞总蛋白质抽提物;
6. 原代细胞总RNA;
7. 原代细胞总DNA;
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