特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、YL及其他非科研用途。
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名称:北京禽流感病毒通用型荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)(AIV-M)厂家
规格:48次/盒|96次/盒
等级:科研试剂
编号:SYA320
产地:国产|进口
一、简介:
禽流感病毒实时荧光qRT-PCR检测试剂是按照美国农业部(USDA)的国际检测标准和我国《禽流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法》(GB/T 19438.1-2004)而制备的商业化检测试剂盒。本试剂盒为中的探针报告基团为6-FAM,淬灭基团为MGB。本方法可定性检测所有亚型禽流感病毒。
二、用途:
本试剂盒适用于检测各种禽类喉咽棉拭子、泄殖腔棉拭子、各种组织样品、尿囊液及细胞培养液等。可用于禽流感病毒感染的辅助诊断、监测及流行病学调查,其检测结果仅供参考。
三、试剂盒组成:(48T)
组份 数量 规格
荧光qRT-PCR反应液(AIV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1 管 50μL/管
阳性对照(AIV-PTC) 1 管 50μL/管
四、储存条件及有效期:
本试剂盒于-18℃以下保存,有效期为6个月。
五、荧光PCR仪器适用范围:
ABI系列,Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。
六、样品的采集与RNA提取
6.1 样品的采集
按照国家标准《高致病性禽流感诊断技术》(GB/T 18936-2003 )和《禽流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法》(GB/T 19438.1-2004 )进行样品的采集。
6.2 样品RNA提取
可按常规方法提取,也可采用商品化试剂盒提取病毒RNA。
(1) 取灭菌的1.5 mL Eppendorf离心管,做好标识。
(2) 每管加入600 µL裂解液,分别加入被检样本200 µL,再加入200 µL*仿,混匀器上振荡混匀5 s,于4℃ 12000 r 离心15 min。
(3) 取无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管,加入-20℃预冷400µL异丙醇,吸取步骤(2)各管中的上清液转移至相应的管中,避免吸出中间层,颠倒混匀。
(4) 于4℃ 12000 r离心15 min,弃上清,倒置于吸水纸上,沾干液体;加入600µL 75%预冷乙醇,洗涤。
(5) 于4℃ 12000 r离心10 min,弃上清,倒置于吸水纸上,沾干液体。
(6) 10000 r离心10 s,用微量加样器将其吸干,室温干燥5 min~10 min。
(7) 加入10µL 无核酸降解酶的水,溶解管底的RNA,5000 r离心5 s,冰上保存备用。若需长期保存须放置-70℃ 冰箱。
注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。
七、检测步骤:
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(AIV-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合物 1 µL N×1 µL
总量 15 µL N×15µL
计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000r离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(AIV-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 real time RT-PCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 5 min
预变性 1循环 94℃ for 30 sec
PCR扩增(PCR amplification ) 40循环 94℃ for 5 sec
60℃ for 30 sec
在60℃延伸时收集荧光信号 。报告基团:设置为FAM。
八、结果分析:
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
8.2 试验成立判定
(1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
(2) 阳性对照(AIV -PTC):均产生扩增曲线。
(3) 以上条件应同时满足 ,否则,此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明AIV核酸阳性。
(2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明AIV核酸阴性。
(3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
(4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行AIV qRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明AIV核酸阳性;否则判为样本阴性。
九、注意事项:
(1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2) 所有使用的离心管高压灭菌,而且必须不含RNA酶。
(3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
(4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
(5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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·蜱传出脑炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA240
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·甲型肝炎(HAV)病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA209
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·鹅源性成分单重荧光PCR检测试剂盒(定量)
编号:SYA309
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·单增李斯特氏菌单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA004
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
本试剂盒适用于增菌培养物、疑似病料及食品中单增李斯特氏菌(Lm)的检测,其检测结果仅供参考。
本试剂盒用一对单增李斯特氏菌特异性引物,结合一条特异性荧光探针,用一步法荧光PCR技术对单增李斯特氏菌DNA进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染
者的病原学诊断。本试剂盒中单增李斯特氏菌的探针报告基团为FAM。
试剂盒组成:
组份 | 数量 | 规格 |
单增李斯特氏菌荧光qPCR反应液(Lm-qPCR MIX) | 1 管 | 720μL/管 |
DNA抽提液(DNA Extraction) | 2管 | 1.5mL/管 |
阴性对照(NTC) | 1管 | 50μL/管 |
阳性对照(Lm-PTC) | 1管 |
50μL/管 |
储存条件:-20℃,有效期6个月。
使用方法:一、样品采集:
➤食品样品:样品的采集与预培养按照《食品安全国家标准食品微生物学检验单核细胞增生李斯特氏菌检验》(GB 4789.30-2010)要求进行。
➤粪便样品:取粪便置于灭菌的收集管中送检。
➤病灶部位样品:取发病部位新鲜渗出物、粘液脓血送检。
注:上述样品建议经过增菌后,收集培养物用于检测。
二、
DNA提取:可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的
商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
➤液体培养物:取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中,8000rpm离心3min,尽量吸弃上清,加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm
离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
➤固体培养物:挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
➤粪便样品:挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中,加入0.5mL生理盐水,振荡混匀,13000rpm离心3分钟,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃
恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
➤其他液体标本:取标本2-3mL,13000rpm离心3min,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR
反应。
注:建议采用相关标准方法进行前增菌,并按照6.2.1方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。
由于阳性对照浓度较高,建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。
三、
检测步骤:1.
试剂的准备从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lm-qPCR MIX),室温融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
试剂 | 每个反应加入的量 | N个反应加入的量 |
荧光PCR反应液 |
15µL | N×15µL |
计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品/阴
性对照(NTC)/阳性对照(Lm-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
2.
qPCR反应条件将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件:
| 1循环 | 50℃ for 2 min |
预变性 |
1循环 | 95℃ for 10 min |
PCR扩增 | 40循环 | 95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec |
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM,淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。
四、
结果分析:1.
结果分析条件设定直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
2.
试验成立判定➤阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
➤阳性对照(Lm-PTC):均产生扩增曲线,且Ct值≤30。
➤以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
3.
结果判定➤在试验成立的条件下,Ct值≤30的样本为阳性,表明Lm核酸阳性。
➤Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明Lm核酸阴性。
➤如果30<Ct值≤35,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
➤对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行Lm qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,则判为样本阳性,表明Lm核酸阳性;否则判为样本阴性。
五、
注意事项:➤初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
➤所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
➤PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
➤样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
➤试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
北京禽流感病毒通用型荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)(AIV-M)厂家关键词:SYA320,禽流感病毒通用型荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)(AIV-M),百奥莱博
·人副流感病毒1型单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA174
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·鸡肠炎沙门氏菌(SPP.E)单重凝胶PCR检测试剂盒
编号:SYA544
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
·脑脊髓炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号:SYA241
等级:科研实验专用
规格:48次/盒
一、
简介:本试剂盒用一对禽脑脊髓炎病毒特异性引物,结合一条特异性探针,用一步法荧光RT-PCR 技术对禽脑脊髓炎病毒RNA 进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
二、
用途:该试剂盒适合于检测脑组织、内脏组织、血液等标本中禽脑脊髓炎病毒(AEV)RNA,用于禽脑脊髓炎病毒(AEV)感染的辅助诊断及流行病学调查,其检测结果仅供参考
三、
试剂盒组成:(48T)
组份 数量 规格
禽脑脊髓炎荧光qRT-PCR反应液(AEV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(AEV-PTC) 1管 50μL/管
四、
储存条件及有效期:本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6个月。
五、
荧光PCR仪器适用范围:ABI系列,Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。
六、
样品的采集与RNA提取6.1
样品的采集病死或扑杀禽的脑部组织2g;待检活禽,用注射器取血5mL 至EDTA-2Na 抗凝管。
6.1.1 血清:用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL,注入无菌的干燥玻璃管,室温(22-25℃)放置30-60min,血标本可自发完成凝集析出血清,或直接使用水平离心机,3000rpm离心5min,吸取上层血清,转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.2 血浆:用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL,注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管,立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次,使抗凝剂与静脉血充分混匀,5-10min后即可分离出血浆,转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.3 拭子、分泌物等样品:在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水,剧烈振荡30s。
棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中,6000rpm离心20s,取上清备用。
6.1.4 病灶组织样品:每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g,手术剪剪碎混匀后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm 离心2min,取上清液100μL 于1.5mL灭菌离心管中。
6.2
RNA提取可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的RNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5μL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。
七、
检测步骤:7.1
试剂的准备从试剂盒中取出荧光qRT-PCR 反应液(AEV-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm 离心10s。
设所需要的PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm 离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(AEV-PTC)5μL,10000rpm 瞬时离心10秒。
7.2
qRT-PCR反应条件将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM,淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。
八、
结果分析:8.1
结果分析条件设定直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
8.2
试验成立判定(1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
(2) 阳性对照(AEV-PTC):均产生扩增曲线。
(3) 以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
8.3
结果判定(1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明AEV核酸阳性。
(2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明AEV核酸阴性。
(3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
(4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行AEV qRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明AEV核酸阳性;否则判为样本阴性。
九、
注意事项:(1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2) 所有使用的离心管高压灭菌,而且必须不含RNA酶。
(3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
(4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
(5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
北京禽流感病毒通用型荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)(AIV-M)厂家关键词:SYA320,禽流感病毒通用型荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)(AIV-M),百奥莱博
辅羧酶 Boc-L-Glutamic acid 5-benzylester 154-87-0
9001-51-8 己糖激酶 Hexokinase
磷酸*二*-柠檬酸缓冲液(pH2.2-8.0) 500ml
BTN130422 CM交换介质 CM Medium
BTN120674 酪蛋白 Casein
F040313 猴IgG抗原 Monkey IgG
HC0143 暗盒
HC0118 透析袋夹子
ARB12727 小鼠3-硝基酪*酸(3-NT)酶标法分析 Mouse 3-nitrotyrosine,3-nt ELISA KIT
ARB10377 人甘露糖结合蛋白/甘露糖结合凝集素(MBP/MBL)elisa检测说明书 Human mannma binding protein/mannan binding lectin,mbp/mbl ELISA KIT
PY01-175 酚红 ind 25克
ZCPTH02 猪凝血酶 1000ku
70-18-8 L-谷胱甘肽(还原型)/还原型谷胱甘肽
BTN4610 G载体 Magic Vector G
Tris平衡酚(pH>7.8) 100ml
DN2801 酵母基因组DNA提取试剂盒(溶液型)
玫瑰红6G Tricyanic acid 989-38-8
BL1310 2×Taq PCR MasterMix(不含染料)
HC0304 Biohit数字瓶口滴定分液器
F040305 猪IgG抗原 Pig IgG
海藻糖无水物 Trilaurin 99-20-7
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温馨提示:不可用于临床ZL。