特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、YL及其他非科研用途。
北京百奥莱博主要从事生物试剂的生产和销*(代"售"),产品线涵盖TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)现货在内的分子生物学试剂产品,还包括PCR及荧光定量PCR、核酸提取试剂盒类、样本核酸保护试剂、核酸提取、克隆与转化、蛋白纯化、蛋白检测、免疫组化、细胞凋亡与抗体等。
名称:TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)现货
编号:WE0247
品Pai:百奥莱博
规格:20次
产地:国产|进口
pUC-T Simple载体是一种GX克隆PCR产物的专用载体,它是由pUC18载体在EcoR V酶切位点处切开,在两侧的3'端添加T而成。由于大部分耐热聚合酶反应时都会在PCR产物的3'端添加一个A,可以与pUC-T 3'端的T互补连接,同时它消除了pUC18载体上的多克隆酶切位点,克隆后的PCR产物将无法使用载体上的限制酶切下,需要在PCR扩增引物上导入合适的酶切位点。此时如果使用PCR扩增引物导入的酶切位点进行DNA酶切时,酶切反应将不会受到T载体上其它多克隆酶切位点上的限制酶影响,可以大大提高酶切效率,增加亚克隆成功率。
试剂盒中配备GX率的T4 DNA Ligase和为快速GXDNA连接优化的2×Quick Ligation Reaction Buffer。连接效率相当于用T4 DNA Ligase 进行常规连接1小时。带有插入片段的重组子可根据α互补原理,进行蓝白斑筛选,判断载体中有无外源基因的插入。克隆后可以用BcaBEST Sequencing Primers和 M13通用引物对PCR产物进行测序。
试剂盒组成:
组份 | 20次 |
pUC-T Simple(50 n g/μl) | 20μl |
Control Insert(50ng/μl) | 10μl |
Quick T4 DNA Ligase | 20μl |
2×Quick Ligation Reaction Buffer | 120μl |
注意事项:
1、Insert DNA 要求
1)连接使用的PCR片段3’末端应带有“A”尾。有些高保真DNA聚合酶,如我公司的Pfu扩增的PCR产物是平滑末端,可使用加A试剂盒加上A尾后,再进行T载体克隆。
2)PCR产物建议进行切胶回收纯化后再进行T载体克隆,以免PCR产物中的非特异片段或残存引物等杂质影响。推荐使用WE0168快速琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒。
2、连接反应要求
1)本试剂盒能使大多数连接反应在25℃条件下5分钟甚至更短时间内达到反应终点,增加反应时间反应效率不会增强。如用快速连接反应1小时后,转化效率会明显降低;如25℃快速连接反应过夜,则转化效率会下降到75%。
2)2×Quick Ligation Reaction Buffer含有ATP,使用前置于冰上使其融化后充分混匀,建议初次使用分装成小管冻存,避免其反复冻融影响DNA连接效率。
3)由于T4 DNA Ligase中含有甘油,比较粘稠容易挂壁,建议使用之前短暂离心将液体收集到管底,取样时枪头尽量不要深入液面太深,以免粘在枪头上造成损失。
4)如快速连接产物用于电转,因快速连接反应体系中的PEG会影响电转效率,建议使用离心柱将连接产物进行DNA纯化(如WE0170快速DNA产物纯化试剂盒)后再进行电转。
3、感受态细胞要求
建议使用GX的热击转化感受态细胞,这样才可能得到比较理想的阳性克隆,如需进行蓝白筛选,宿主细胞必须具有正确的基因型(F´编码的【lacZ ΔM15】)产生ω片段,才能与载体DNA产生的LacZ α 多肽结合,表现出β-半乳糖苷酶活性(α互补)。pUC-T Simple载体以pUC18载体为基础构建而成,因此,适合pUC18载体的感受态细胞都可以使用。推荐使用本公司WE0251 TOP10感受态细胞、WE0252 DH5α感受态细胞。
4、阳性克隆筛选
阳性DNA片段成功插入至pUC-T Simple Vector中后,一般情况下β-半乳糖苷酶的表达将受到破坏,重组克隆体在含有X-Gal、IPTG、Amp的LB固体培养基上培养时将显示白色菌落。但有时比较短的DNA片段插入载体时,基因的读码框有可能正好与LacZ的读码框相吻合,克隆体也会显示蓝色菌落。
5、阳性对照
为了确认实验操作的正确性,以及实验试剂的有效性,我们建议使用本试剂盒中配备的Control Insert(750 bp)进行阳性对照实验。
使用方法:
1、按以下体系配制反应液:
成分 | 反应体系 | 对照体系 |
pUC-T Simple(50ng/μl) | 1μl | 1μl |
DNA 插入片段 * | 0.1 -0.3 pmol | -- |
Control Insert DNA | -- | 1μl |
2×Quick Ligation Reaction Buffer | 5μl | 5μl |
Quick T4 DNA Ligase | 1μl | 1μl |
RNase-Free Water | 补足至10μl | 补足至10μl |
Insert DNA的使用量:在进行克隆时,Vector DNA和 Insert DNA的摩尔比一般为:1:2-1:10,可根据实验情况选择适当的Vector DNA和 Insert DNA的摩尔数比。Insert DNA的使用量=nmol数×660×Insert DNA bp数。本载体1μl(50ng)的摩尔数约为0.03 pmol。
2、轻轻混合,短暂离心。25℃反应5分钟。
注意:反应时间不要超过15分钟,否则会降低连接效率。
3、反应结束后,将DNA连接产物存放于0-4℃,而后进行转化实验;也可将DNA连接产物置于-20℃保存。
注意:勿进行加热失活反应。
4、将连接产物加入50μl感受态细胞中(将感受态细胞置于冰上融化),冰浴30分钟。
注意:用化学法转化时,连接产物的加入量不要超过感受态细胞体积的10%。
5、42℃热击45秒钟,迅速将离心管转移到冰浴中,冰上静置2-3分钟。
6、加入450μl无菌SOC或LB培养基,混匀后置于37℃摇床,150 rpm振荡培养45分钟,使菌体复苏。
7、根据实验要求,取适量已转化的感受态细胞,加到含有X-Gal、IPTG和Amp的LB固体培养基上,用无菌的涂布棒将细胞均匀涂开,将平板置于37℃,直至液体被吸收后,倒置培养,37℃培养12-16小时。
8、计算白、蓝色菌落,挑选白色菌落,使用PCR法或酶切法鉴定插入片段是否正确。
储存条件:-20℃。
关于
TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)现货的更详细说明,请致电我公司咨询,我们将以最饱满的热情为您提供解答,此外,我公司专业供应下列产品:
·低背景ECL化学发光检测试剂盒
编号:WE0307
英文名称:cwECL Western Blot Kit
规格:50ml|250ml
低背景化学发光检测试剂盒是免疫印迹实验中与辣根过氧化物酶(HRP)配套使用的的低背景底物检测试剂盒。本产品能够在HRP的催化下发生化学反应而发光,可用于检测固定在膜上的蛋白质等生物大分子。其高灵敏度能够检测ng级别的抗原,发光信号强
烈持久,可以使用照相技术(X-光胶片曝光)或者其他成像方法(如荧光或化学发光成像仪)进行检测。
试剂盒组成:
组成 | 50ml | 250ml |
cwECL-A(Luminol) |
25ml | 125ml |
cwECL-B(Peroxide) | 25ml | 125ml |
注意事项:
1、在与膜发生接触过程中,请佩戴手套且使用干净镊子等洁净器材,避免蛋白污染及高背景。
2、避光条件下,配制好的化学发光检测底物工作液可在室温下稳定保存8小时。阳光或其他强光会影响工作液,故应避免强光长时间的照射。正常实验室灯光短时间照射不影响工作液的使用。
3、百奥莱博提供多种蛋白转移用膜、封闭液、一抗、酶标二抗、缓冲液等,详情请查询公司网站。
操作步骤:
1、二抗孵育完毕后,将印迹膜充分洗涤。
2、根据需要量,将cwECL-A和cwECL-B按照1:1的比例等体积混合,配制为发光检测底物工作液(一张8 cm×6 cm的膜大约使用1ml工作液)。
3、弃去洗涤缓冲液,将发光底物工作液滴加在印迹膜上,确保工作液覆盖整张膜,室温孵育3-5分钟。
4、用移液器吸去多余发光底物工作液,将印迹膜置于两层干净的塑料薄膜之间,此过程应小心完成,避免膜与膜之间产生气泡。
5、在暗室内进行X-光胶片曝光,或将膜放置到化学发光成像仪内,按照仪器说明书进行检测。
问题 | 可能原因 | 解决方法 |
胶片反相(白色条带,黑色背景) | 系统中HRP过量 | 稀释HRP标记物至少10倍以上 |
膜上出现棕色或黄色条带 |
暗室中看到强烈发光 |
发光信号持续时间过短 |
信号较弱或者无信号 | 发光反应系统中HRP 过多,消 耗底物过快,引起信号迅速降低 | 稀释HRP标记物至少10倍以上 |
抗原/抗体量不够 | 增加抗原/抗体使用量 |
蛋白转移率低 | 优化转移系统 |
高背景 | 系统中HRP 过量 | 稀释HRP标记物至少10倍以上 |
封闭不足 | 优化封闭程序 |
封闭试剂选择不当 | 选择另一种封闭试剂 |
冲洗不充分 | 增加冲洗时间,次数 |
曝光过度 | 减少曝光时间 |
抗原/抗体浓度过高 | 降低抗原/抗体使用浓度 |
蛋白条带为点状 | 蛋白转移失败 | 优化转移过程 |
膜未平衡 | 按照说明书处理膜 |
胶片与膜之间有气泡 | 曝光前去除所有气泡 |
出现非特异条带 (高背景、信号维持时间较短) | 系统中HRP过多 | 稀释HRP标记物 |
出现非特异条带 (背景干净信号维持时间正常) | 一抗用量过多 | 进一步稀释一抗 |
SDS 导致非特异结合 | 在实验过程中避免使用SDS |
储存条件:2~8℃,避光保存
TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)现货关键词:pUC-T Simple TA Cloning Kit,含载体,连接酶,TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶),WE0247
·血液基因组DNA提取试剂盒
编号:WE0176
英文名称:BalbGen Blood DNA Kit
规格:可处理50ml血液|可处理200ml血液
本试剂盒提供了一种快速、灵活的方法,适用于新鲜或冷冻全血(用柠檬酸盐、EDTA或肝素等抗凝剂处理过的样品)提取总DNA,包括基因组DNA和线粒体DNA。本品可以灵活处理0.1-20ml的全血,采用非离心柱的方法,无需使用*酚、*仿等有机溶剂,有效去除蛋白、色素、脂类及其它YZ性杂质污染。整个过程在一个管中操作,减少了污染及样本混淆的风险。提取的DNA产量高、质量好,可直接用于PCR、荧光定量PCR、酶切和Southern Blot以及文库构建等实验。
试剂盒组成:
组份 | 可处理50ml血液 | 可处理200ml血液 |
Buffer FG1 | 2×65ml | 2×260ml |
Buffer FG2 | 30ml | 120ml |
Buffer GE | 15ml | 60ml |
蛋白酶K | 3 mg | 12.5mg |
蛋白酶K 储存液 | 1.25ml | 1.25ml |
保存条件:Buffer FG1 2~8℃,其他组分室温(15~30℃)。
产品特点1、纯度高:提取的基因组DNA可直接用于下游PCR、荧光定量PCR、酶切等各种实验。
2、提取量大:可从0.1-20ml的全血中提取DNA,无需使用*酚、*仿等有机溶剂。
3、兼容性强:适用于处理各种血液和细胞样本。
自备试剂:异丙醇、70%乙醇
实验前准备及重要注意事项/strong>:
1、向蛋白酶K 中加入指定用量(0.3ml/1.25ml)的蛋白酶K 储存液使其溶解,-20℃保存。配制好的蛋白酶K 勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。
2、所有离心操作均在室温下完成。
3、血液样品反复冻融,会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。所得基因组DNA也应尽可能避免反复冻融,以免降解。如果提取冷冻血液的基因组DNA,建议37℃水浴,迅速解冻后再进行后续操作。
4、血液样品的储存:
1)短期保存:已加入抗凝剂的血液样品可在2~8℃储存最多10天,对于某些实验例 如Southern杂交等,需要得到完整全长的基因组DNA,请将血液样品在2~8℃储存不超过3天,此时基因组DNA的降解程度较轻。
2)长期保存:已加入抗凝剂的血液请置于-70℃保存(如果提取的是高分子量的DNA,推荐使用EDTA作为抗凝剂)。
操作步骤:
一、从100~900μl全血中提取基因组(以300μl血液处理量为例)
1、取300μl全血于2ml离心管(自备)中,加入300μl(样本等体积)Buffer FG1,上下颠倒混匀5次,10000×g离心30秒,弃上清。
2、再向离心管中加入450μl(1.5倍样本体积)Buffer FG1,涡旋震荡,使沉淀完全分散。10000g离心30秒,弃上清,并把离心管倒置于干净的吸水纸上,放置2分钟。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛,所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上,可以减少管壁上清的回流。
3、按照附表配制Buffer FG2与蛋白酶K 的混合液(比例100:1)。
注意:此混合液现用现配.井在配好后1小时之内用完。
4、加入150μl的Buffer FG2与蛋白酶K 的混合液,立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意:
1)如果有多个样品同时操作,加入Buffer FG2/蛋白酶K 混合液后立即涡旋震荡,不要等所有样品部加完后再震荡。
2)通常涡旋震荡3-4次.毎次5秒,可以使沉淀充分悬浮,如果涡旋震荡后发现沉淀中含胶状物质可以再加入30μl的Buffer FG2/蛋白酶K 混合液,再次混旋混匀。
5、65℃孵育10分钟,其间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿说明蛋白消化完全。
6、加入150μl导丙醇,上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或簇状基因组DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀DNA非常重要。如果样品中白细胞含量少,可能看不到DNA,则至少上下频倒高心管20次确保沉淀完全。
7、10000×g离心5分钟。
注意:如果沉淀贴壁不牢,可以适当延长离心时间或増大离心力。
8、弃上清,并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。
注意:少数时候沉淀可能贴壁不牢,注意不要吸弃沉淀。
9、加入300μl的70%乙醇,涡旋震荡5秒,10000×g离心5分钟,弃上清。
注意:如果沉淀贴壁不牢,可以适当延长离心时间或増大离心力。
10、把离心管倒置于干净的吸水纸上5分钟,确保沉淀在管中 。
注意:在管底可见白色的DNA沉淀,在极少情況下沉淀可能会松弛 ,所以要缓慢倒掉上清。
11、空气干燥DNA沉淀直至所有的液体挥发干净(至少5分钟)。
注意:乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、 PCR等)实验,但避免过度干操DNA沉淀,因过度干燥会使DNA难于溶解。
12、加入200lμl的Buffer GE,低速涡旋5秒,65℃孵育1小时溶解DNA,期间轻弹数次助溶。-20℃保存DNA。
注意:如果DNA没有完全溶解,可室温过夜。如果使用少量的FG3溶解DNA,建议延长孵育时间。
二、从1~5ml全血中提取基因组(以3ml血液外理量为例)
1、取3ml全血于15ml离心管(自备)中,加入3ml(样本等体积)Buffer FG1,上下颠倒混匀5次,2500×g离心5分钟,弃上清。
2、再向离心管中加入4.5ml(1.5倍样本体积)Buffer FG1,涡旋震荡,使沉淀完全分散。2500×g离心5分钟,弃上清,并把离心管倒置于干净的吸水纸上,放置2分钟。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛 ,所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上,可以減少管壁上清的回流。
3、按照附表配制缓冲液FG2与蛋白酶K 的混合液(比例100:1)。
注意:此混合液现用现配,井在配好后1h之内用完。
4、加入1.5ml Buffer FG2/蛋白酶K 混合液,立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意:
1)如果有多个样品同时操作,加入Buffer FG2/蛋白酶K 混合液后立即涡旋振荡,不要等所有样品都加完后再震荡。
2)通常涡旋震荡3-4次,毎次5秒可以使沉淀充分悬浮,如果涡旋震荡后发现沉淀中含胶状物质可以再加入300lμl的Buffer FG2/蛋白酶K 混合液,再次涡旋混匀。
5、65℃孵育10~30分钟,其间颠倒混匀数次。
注意:如果样品额色从红色变成橄榄绿说明蛋白消化完全。
6、加入1.5ml导丙醇,上下颠倒彻底混匀直至看到DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀DNA非常重要。如果样品中白细胞含量少,可能看不到DNA,则至少上下颠倒离心管20次确保沉淀完全。
7、2500×g离心5分钟。
注意:如果沉淀贴壁不牢,可以造当延长离心时间或増大离心力。
8、弃上清,并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。
注意:在管底可见自色的DNA沉淀,在极少情况下沉淀可能会松弛 ,所以要缓慢倒掉上清。
9、加入1.5ml的70%乙醇,涡旋震荡5秒,2500×g离心5分钟,弃上清。
注意:如果沉淀贴壁不牢.可以适当延长离心时间或増大离心力。
10、把离心管倒置于干净的吸水纸上5分钟,确保沉淀在管中 。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛,所以要缓慢倒掉上清。
11、空气干燥DNA沉淀直至所有的液体挥发干净(至少5分钟)。
注意:乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、 PCR等)实验,但避免过度干燥DNA沉淀,因过度干燥会使DNA难于溶解。
12、加入300μl的Buffer GE,低速涡旋5秒,65℃孵育1小时溶解DNA,期间轻弹数次助溶。一20℃保存DNA。
注意:如果DNA没有完全溶解,可室温过夜。如果使用少量的FG3溶解DNA,建议延长孵育时间。
三、从6~20ml全血中提取基因组(以10ml血液处理量为例)
1、取10ml全血于50ml离心管(自备)中,加入10ml Buffer FG1,上下颠倒混匀5次,2500×g离心5分钟。
2、再向离心管中加入15ml Buffer FG1,涡旋震荡,使沉淀完全分散。2500×g离心5分钟,弃上清,并把离心管倒置于干净的吸水纸上,放置2分钟。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛,所以要缓慢倒掉上清。
3、按照附表配制缓冲液FG2与蛋白酶K 的混合液(比例100:1)。
注意:此混合液现用现配,井在配好后1小时之内用完。
4、加入5ml Buffer FG2/蛋白酶K 混合液,立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意:
1)如果有多个样品同时操作,加入Buffer FG2/蛋白酶K 混合液后立即涡旋震荡,不要等所有样品都加完后再震荡。
2)通常涡旋震荡3-4次,毎次5秒可以使沉淀充分悬浮,如果涡旋震荡后发现沉淀中含胶状物质可以再加入1ml BufferFG2/蛋白酶K 混合液,再次涡旋混匀。
5、65℃孵育30分钟,其间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿说明蛋白消化完全。
6、加入5ml导丙醇,上下颠倒彻底混匀直至看到DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀DNA非常重要,应该至少上下颠倒离心管20次确保沉淀完全。
7、2500×g离心5分钟。
注意:如果沉淀贴壁不牢,可以适当延长离心时间或増大离心力。
8、弃上清,并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。
注意:在管底可见白色的DNA沉淀,在极少情况下沉淀可能会松弛 ,所以要缓慢倒掉上清。
9、加入5ml的70%乙醇,涡旋震荡5秒,2500×g离心5分钟,弃上清。
注意:如果沉淀贴壁不牢,可以适当延长离心时间或増大离心力。
10、把离心管倒置于干净的吸水纸上5分钟,确保沉淀在管中 。
注意:在极少情况下沉淀可能会松驰 ,所以要缓慢倒掉上清。
11、空气干燥DNA沉淀直至所有的液体挥发干净(至少5分钟)。
注意:乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、 PCR等)实验,但避免过度干燥DNA沉淀,因过度干燥会使DNA难于溶解。
12、加入1ml的Buffer GE,低速涡旋5秒,65℃孵育1小时溶解DNA,期间轻弹数次助溶。-20℃保存DNA。
注意:如果DNA没有完全溶解.可室温过夜。如果使用少量的FG3溶解DNA,建议延长孵育时间。
附表:不同体积血液所需各种缓冲液用量 缓冲液 | 血液样品的体积(μl) |
100 | 300 | 1000 | 3000 | 5000 | 10000 | 20000 |
Buffer FG1(μl) | 250 | 750 | 2500 | 7500 | 12500 | 25000 | 50000 |
Buffer FG2(μl) | 50 | 150 | 500 | 1500 | 2500 | 5000 | 10000 |
蛋白酶K(μl) | 0.5 | 1.5 | 5 | 15 | 25 | 50 | 100 |
异丙醇(μl) | 50 | 150 | 500 | 1500 | 2500 | 5000 | 10000 |
70%乙醇(μl) | 50 | 150 | 500 | 1500 | 2500 | 5000 | 10000 |
Buffer GE(μl) | 100 | 200 | 200 | 300 | 500 | 1000 | 1000 |
补加FG2和蛋白酶K 混合液 | 10 | 30 | 100 | 300 | 500 | 1000 | 1000 |
储存条件:室温(15~30℃)。
TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶)现货关键词:pUC-T Simple TA Cloning Kit,含载体,连接酶,TA快速连接试剂盒(pUC-T Simple)(含载体,连接酶),WE0247
·抗HA标签单克隆抗体
编号:WE0349
英文名称:Anti HA-Tag Mouse Monoclonal Antibody
规格:100μl
该抗体高度特异识别重组蛋白C末端或N末端的HA标签,而不受邻近*基酸组成的影响,可用于检测各种表达载体表达的HA-Tag融合蛋白。
抗体类型:鼠单克隆抗体IgG1
免疫原:人工合成流感病毒血凝素多肽(YPYDVPDYA)
应用范围:
WB(1:500-5000)
ELISA(1:200-20000)
IP(2 µg-5 µg)
·2×BaldStar Taq MasterMix(含染料)
编号:WE0112
英文名称:2×BaldStar Taq MasterMix(With Dye)
规格:5ml
本品是由BaldStar Taq DNA Polymerase、PCR Buffer、Mg2+、dNTPs及PCR稳定剂和增强剂组成的预混体系,预混好的PCR混合液使操作更加简单快捷,可ZD限度地减少人为误差和污染。该产品所含有的BaldStar Taq DNA Polymerase是一种经化学修饰的、全新GXTaq DNA Polymerase,在常温下酶的活性被完全封闭,使得该酶在低温或常温下没有活性,从而有效避免在常温条件下由引物和模板非特异性结合或引物二聚体而产生的非特异性扩增,酶的激活须在95℃下孵育10分钟。独特的缓冲体系使酶的应用更为广泛,使GC含量高、二级结构复杂以及低拷贝的模板,均能GX扩增,特有的MasterMix配方使整个反应体系稳定性更强。本产品已加入染料(蓝色),反应结束后可直接进行电泳检测,无需再使用上样缓冲液。用本品进行PCR扩增,PCR产物3"末端含有A,可直接用于T/A克隆。本产品特异性强,PCR扩增后无需胶回收去除杂带,可直接用于下游克隆或芯片杂交等实验。主要应用于常规的PCR、RT-PCR和多重PCR,特别适用于对特异性要求较高的PCR反应。
产品组成: 组份 | 5ml |
2×BaldStar MasterMix(With Dye) | 5×1ml |
ddH2O | 5×1ml |
注意:2×BaldStar MasterMix含有BaldStar DNA Polymerase,3.4 mM MgCl2和 400μM each dNTP。
质量控制:
1、经检测无外源核酸酶活性;
2、PCR方法检测无宿主残留DNA;
3、能有效扩增人基因组中的单拷贝基因;
4、2~8℃存放三个月,无明显活性改变。
使用方法:
以下举例为以人基因组DNA为模板,扩增1 kb的片段的PCR反应体系和反应条件,实际操作中应根据模板、引物结构和目的片段大小不同进行相应的改进和优化。
1、PCR反应体系 试剂 | 50μl反应体系 | 终浓度 |
2×BaldStar MasterMix(With Dye) | 25μl | 1× |
Forward Primer,10μM | 2μl | 0.4μM |
Reverse Primer,10μM | 2μl | 0.4μM |
Template DNA | <0.5μg | <0.5μg/50μl |
ddH2O | up to 50μl | |
注意:引物浓度请以终浓度0.1-1.0μM作为设定范围的参考。扩增效率不高的情况下,可提高引物的浓度;发生非特异性反应时,可降低引物浓度,由此优化反应体系。
2、PCR反应条件 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 95℃ | 10 min | |
变性 | 95℃ | 30 s | 30-40 个循环 |
退火 | 55-65℃ | 30 s |
延伸 | 72℃ | 60 s |
终延伸 | 72℃ | 5 min | |
注意:
1)一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度Tm低5℃,退火时间一般为30-60 s,无法得到理想的扩增效率时,适当降低退火温度;发生非特异性反应时,提高退火温度,由此优化反应条件。
2)延伸时间应根据所扩增片段大小设定,本产品中所包含的BaldStar Taq DNA Polymerase的扩增效率为1-2 kb/min。
3)可根据扩增产物的下游应用设定循环数。如果循环次数太少,扩增量不足;如果循环次数太多,错配机率会增加,非特异性背景严重。所以在保证产物得率的前提下应尽量减少循环次数。
4)本产品须在预变性95℃,10 min条件下实现酶的活化。
储存条件:-20℃,避免反复冻融。
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温馨提示:不可用于临床ZL。