GBdirect 血液直接PCR是一种新颖的可直接从血液中扩增不同大小DNA片段的PCR试剂盒,具有适用性广和稳定性强的特点,并有效地克服了传统裂解法只能扩增小片段基因的局限性。PCR反应的DNA模板可直接来自全血,或经GBdirect Lysis Buffer处理后的血液裂解产物,用户可根据实际情况选择模板制作方式,无需提取血液基因组DNA。可用于快速血液PCR检测,STR分子标记分析及血液SNP基因分型等。GBdirect 血液直接PCR 试剂盒由Extraction Buffer、Lysis Buffer、 2x PCR Premix和HiFi DNA聚合酶所组成。
产品信息: 货号 | 试剂盒组分 | 规格 | 保存 |
GB4100-050 | 血液 Extraction Buffer | 5 ml | 4℃ |
血液 Lysis Buffer | 5 ml | 4℃ |
2X PCR Premix | 0.65 ml | -20℃ |
HiFi DNA聚合酶 | 0.1 ml | -20℃ |
GB4100-100 | 血液 Extraction Buffer | 10 ml | 4℃ |
血液 Lysis Buffer | 10 ml | 4℃ |
2X PCR Premix | 1.3 ml | -20℃ |
HiFi DNA聚合酶 | 0.2 ml | -20℃ |
GB4100-200 | 血液 Extraction Buffer | 20 ml | 4℃ |
血液 Lysis Buffer | 20 ml | 4℃ |
2X PCR Premix | 2.6 ml | -20℃ |
HiFi DNA聚合酶 | 0.4 ml | -20℃ |
存储条件:应避免反复冻融。有效期6个月。
操作流程图:
实验步骤(一) 模板制备 方法1:全血一步法 (适用于新鲜血液)1. 在PCR反应管内分别加入2x PCR Premix、HiFi DNA聚合酶、PCR引物及大约5 μl新鲜血液。
2. 加入适量的ddH2O使得PCR反应体积为25 μl。
方法2:全血裂解法 (适用于反复冻融的血液)1. 取30 μl全血于1.5 ml离心管内,加入100 μl Lysis Buffer ,涡旋混匀。
2. 37℃水浴10分钟。切勿振荡,以免造成基因组DNA的断裂。14,000 rpm 离心1分钟。上清液即可作为PCR反应所需的DNA模板。
方法3:去红血细胞法 (适用于陈旧血液)1. 取25 μl全血于1.5ml 离心管内,加入100 μl Extraction Buffer 快速涡旋或用移液器吸头上下吸取5次。将离心管移至离心机 (注:管柄朝外放置以便离心后的沉淀位于底部的管柄方向)。14,000 rpm离心1分钟,用200 μl移液器移走上层红色液体,保留沉淀。沉淀应为粉红色或透明状。
2. 向含有沉淀的离心管中加入100 μl Lysis Buffer ,涡旋充分,确保沉淀的细胞得到完全悬浮。
3. 37℃水浴10分钟。然后14,000rpm 离心1分钟。上清液即可作为PCR反应的DNA模板。
注意模板Z好现做现用,因为裂解后的DNA模板中除了DNA以外还含有许多其他杂质。模板可置于4℃暂时或-20℃长期保存, 但再次使用前应重新在37℃ 水浴中放置5分钟。
(三)PCR反应设置 1. 根据(表一)设置PCR反应。若发现PCR条带出现弥散现象,建议增加DNA 模板用量;若没有PCR扩增产物,在排除其它失败原因的前提下,使用TE缓冲液对DNA 模板进行稀释,比例可为1:1或1:2(DNA 模板:稀释液),并尝试3种不同DNA模板用量进行优化,以确定稀释比例及模板用量。例如,在25 μl PCR体系中可分别加入 4 μl、5 μl、6 μl DNA模板作为优化实验条件。
表一. PCR反应设置:
PCR反应成分 | 25 μl体系 |
DNA 模板(μl) | 5 |
2X PCR premix(μl) | 12.5 |
HiFi DNA聚合酶(μl) | 2 |
Forward & Reverse Primers (10 μM)(μl) | 0.25 |
ddH2O | to 25 μl |
表二. PCR循环设定(推荐):
温度 | 94℃ | 94℃ | 55-58℃ | 72℃ | 72℃ |
时间 | 5 分钟 | 45 秒 | 45 秒 | 1分钟/1kb | 5 分钟 |
循环 | 1次 | 35次 | 1次 |
2. 实验结果分析:PCR 反应没有得到预期结果,参考Q/A表制定解决方案,同时建议设立阳性及阴性对照反应以发现问题所在。阳性反应可用50 ng纯化的血液DNA为模板,阴性反应以ddH2O为模板,引物可采用以前成功扩增的引物。
温馨提示:不可用于临床ZL。