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名称:北京一步法RT-PCR试剂盒厂家
英文名:UltraRT One Step RT-PCR Kit
编号:WE0129
规格:100次
本试剂盒是专为一步法RT-PCR实验研制,逆转录和PCR在同一反应体系中进行,反应过程中无需添加试剂,无需打开管盖,在避免污染的同时提高了检测灵敏度和实验效率。本试剂盒包括全新GX逆转录酶、快速热启动DNA聚合酶,同时包含适用于逆转录和PCR扩增的反应缓冲液和实验中所必需的其它组分。UltraRT逆转录酶RNase H活性缺失,减少了逆转录反应中RNA的降解。该逆转酶逆转录效率高,可对少量RNA模板进行良好的逆转录反应。PCR反应使用的快速热启动DNA聚合酶具有扩增效率高、特异性强、延伸速度快的优良性能。独特的缓冲体系使逆转录酶和聚合酶同时发挥ZD功效。使用本试剂盒扩增得到的目的产物3"端附有一个″A″碱基,可直接用于T/A克隆。
试剂盒组成:
组份 | 100次 |
UltraRT OneStep EnzymeMix | 50μl |
2×UltraRT OneStep Buffer | 1.4ml |
RNase-Free Water | 1.5ml |
注意事项:
1、在操作过程中应避免RNase污染,防止RNA降解或实验中的交叉污染,建议在专门的区域进行RNA操作,使用专门的仪器和耗材,操作人员带口罩和一次性手套并经常更换手套。
2、实验尽量使用一次性塑料器皿,若使用玻璃器皿,应使用0.1%DEPC(焦碳酸二乙酯)水溶液在37℃处理12小时,并在120℃下高压灭菌30分钟后使用,或者将玻璃器皿在180℃下干热灭菌60分钟后使用。实验中用到的无菌水应使用0.1%的DEPC处理后进行高压灭菌。
3、本试剂盒中的所有试剂使用前请上下颠倒轻轻混匀,尽量避免起泡,并经短暂离心后使用。所涉及的酶类使用后应尽快放回-20℃,避免反复冻融。
4、本试剂盒必须使用特异性引物,引物的选择可根据具体实验来选择,引物设计的好坏直接影响到RT-PCR 反应的结果,设计引物时需考虑GC含量,引物长度,引物位置,PCR产物的二级结构等因素,建议采用专业的引物设计软件来设计。
使用方法:
1、将RNA模板、引物、OneStep RT-PCR Buffer、UltraRT OneStep RT-PCR EnzymeMix和RNase-Free Water溶解并置于冰上备用。
2、根据以下表格配制反应体系:
试剂 | 25μl反应体系 | 终浓度 |
2×UltraRT OneStep Buffer | 12.5μl | 1× |
Forward Primer,10μM | 1μl | 0.4μM |
Reverse Primer,10μM | 1μl | 0.4μM |
UltraRT OneStep EnzymeMix | 0.5μl | |
RNA Template | Xμl | 1 pg–1μg |
RNase-Free Water | up to 25μl | |
注意:引物浓度请以终浓度0.1-1.0μM作为设定范围的参考。扩增效率不高的情况下,可提高引物的浓度;发生非特异性反应时,可降低引物浓度,由此优化反应体系。
3、涡旋震荡混匀,短暂离心,将溶液收集到管底。
4、将热循环仪预热到45℃,将PCR管置于热循环仪中,进行RT-PCR反应。
反应条件:
步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
反转录 | 45℃ | 30 min | |
PCR预变性 | 95℃ | 2 min | |
变性 | 94℃ | 30 s | 30-40 个循环 |
退火 | 55-65℃ | 30 s |
延伸 | 72℃ | 30 s |
终延伸 | 72℃ | 5 min | |
注意:
1)一般PCR实验中退火温度比扩增引物的熔解温度Tm低5℃,退火时间一般为20-30秒,无法得到理想的扩增效率时,适当降低退火温度;发生非特异性反应时,提高退火温度,由此优化反应条件。
2)延伸时间根据扩增的片段大小设定,本产品中包含的DNA Polymerase扩增效率为1 kb/30s。
3)可根据扩增产物的下游应用设定循环数。循环次数太少,扩增量不足;循环次数多,错配机率会增加,非特异性背景严重。所以,在保证产物得率的前提下,应尽量减少循环次数。
5、反应结束后取5μl反应产物,加入适量上样缓冲液后进行电泳检测结果。
储存条件:-20℃,避免反复冻融。
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北京一步法RT-PCR试剂盒厂家关键词:一步法RT-PCR试剂盒,UltraRT One Step RT-PCR Kit,WE0129
·植物RNA提取试剂盒(含DNase I)
编号:WE0200
英文名称:RNAtiqu Plant RNA Extraction Kit(DNase I)
规格:50次
本试剂盒用于从各种植物中提取纯化高品质总RNA,也适用于真菌菌丝RNA的提取。独特的Shredder分离柱,用于匀质化和过滤高粘度的植物或真菌裂解物,同时采用硅基质膜吸附RNA进行纯化,使多聚糖等各种污染物通过洗涤被有效去除,经洗脱的RNA可直接用于各种下游实验。由本试剂盒提取RNA分子量大于200碱基,纯度高,几乎无DNA残留。如果是对微量DNA非常敏感的RNA实验,残留的DNA可利用无RNase的DNase在柱上进行消化去除。提取的RNA可用于Northern Blot、Dot Blot 、RT-PCR和体外翻译等实验。
试剂盒组成:
组份 | 50次 |
DNase I | 1000 U |
10×Reaction Buffer | 1000μl |
Buffer RL | 35ml |
Buffer RLC | 35ml |
Buffer RW1 | 40ml |
Buffer RW2(浓缩液) | 11ml |
RNase-Free Water | 10ml |
过滤柱FL及收集管 | 50套 |
吸附柱RM及收集管 | 50套 |
RNase-Free离心管(1.5ml) | 50个 |
保存条件:DNase I及10×Reaction Buffer -20℃保存,其它组分室温(15~30℃)。
自备试剂:β-巯基乙醇、无水乙醇(新开封或提取RNA专用)。
实验前准备及重要注意事项/strong>:
1、预防RNase污染,应注意以下几方面:
① 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
② 配制溶液应使用无RNase的水。
③ 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
2、预防RNase污染,应注意以下几方面:
① 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
② 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10分钟,用水彻底冲洗后高压灭菌。
③ 配制溶液应使用无RNase的水。
④ 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
3、提取的样品避免反复冻融,否则影响RNA提取的量和质量。
4、Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇,1ml Buffer RL加10μl β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL室温可保存1个月。Buffer RLC使用时不需加β-巯基乙醇。
5、DY次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。
6、Buffer RL和Buffer RLC如果产生沉淀,请加热使其溶解后室温放置。
7、所有离心步骤均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。
操作步骤:
1、50-100 mg植物组织在液氮中迅速研磨成粉末,加入600μl Buffer RL(使用前检查是否加入β-巯基乙醇)或Buffer RLC。涡旋振荡使其充分裂解。
注意:
① Buffer RL主要成分为异硫*酸胍,适用于大多数植物组织的裂解。但有些植物组织(如玉米的胚乳),由于次级代谢产物较特殊,异硫*酸胍使样品产生沉淀,导致RNA提取效果不佳,此时可加入Buffer RLC替代Buffer RL。
② 56℃孵育1-3分钟有助于组织的裂解,但是淀粉含量高的植物不要进行高温孵育。
2、将步骤1所得全部液体转移至已装入收集管的过滤柱中,12000rpm(~~13400×g)离心2分钟,将收集管中的上清液转移到一个新的离心管(自备)中。
注意:
① 在吸取液体时可以将枪头JD剪掉,便于取样。
② 过滤柱FL可以除去大部分的碎片,但仍会有小部分流出,离心后会在收集管内形成沉淀,在进行下一步时注意避免吸到沉淀。
3、在步骤2所得干净的裂解液中加入0.5倍体积的无水乙醇,迅速混匀。
注意:加入乙醇后可能会产生沉淀,但不影响后续试验。
4、将上步得到的溶液转移到已装入收集管的吸附柱中,若一次不能将全部溶液加入吸附柱中,请分两次转入; 12000rpm离心15秒,弃掉废液,将吸附柱重新放回收集管中。
5、向吸附柱中加入350μl Buffer RW1,12000rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
6、配制DNase I 混合液:取52μl RNase-Free Water,向其中加入8μl 10×Reaction Buffer和20μl DNase I(1 U/μl),混匀, 配制成终体积为80μl的反应液。
7、向吸附柱中直接加入80μl DNase I 混合液,20-30℃孵育15分钟。
8、向吸附柱中加入350μl Buffer RW1, 12000rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
9、向吸附柱中加入500μl Buffer RW2(使用前检查是否加入无水乙醇), 12000rpm离心15秒,弃废液。
10、重复步骤9。
11、将吸附柱放回收集管中,12000rpm离心1分钟,将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干吸附柱中的无水乙醇。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
12、将吸附柱装入新的离心管中,向吸附膜的中间加入30-50μl RNase-Free Water,室温放置1分钟,12000rpm离心1分钟,得到的RNA溶液保存在-70℃,防止降解。
注意:
① RNase-Free Water体积不应小于30μl,体积过小影响回收率。
② 如果要提高RNA的产量,可用30-50μl新的RNase-Free Water重复步骤12。
③ 如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤12。
储存条件:室温(15~30℃)。
北京一步法RT-PCR试剂盒厂家关键词:一步法RT-PCR试剂盒,UltraRT One Step RT-PCR Kit,WE0129
·2×Pfu MasterMix(含染料)
编号:WE0108
英文名称:2×Pfu MasterMix(With Dye)
规格:5ml
本品为Pfu DNA Polymerase、PCR Buffer、Mg2+、dNTPs以及PCR稳定剂和增强剂组成的预混体系,浓度为2×。Pfu DNA Polymerase具有5"-3"DNA聚合酶活性和5"-3"外切核酸酶活性的同时具有3"-5"外切核酸酶活性,因此在DNA扩增过程中具备纠错能力,是目前发现的错配率ZD的耐高温DNA Polymerase。预配好的PCR混合液使操作更加简单快捷,可ZD限度地减少人为误差和污染。的MasterMix配方使整个反应体系非常稳定,重复性好。本产品已加入染料(蓝色),反应结束后可直接进行电泳检测,无需再使用上样缓冲液。本产品所含的Pfu DNA聚合酶具有错配率低,耐高温的特点,适用于基因克隆、基因定点突变、SNP和末端补平等反应。
产品组成: 组份 | 1ml | 5ml |
2×Pfu MasterMix(With Dye) | 1ml | 5×1ml |
ddH2O | 1ml | 5×1ml |
注意:2×Pfu MasterMix含有Pfu DNA Polymerase, 3 mM MgCl2和400μM each dNTP。
质量控制:
1、经检验无外源核酸酶活性;
2、PCR方法检测无宿主残余DNA;
3、能有效地扩增多种基因组中的单拷贝基因;
4、2~8℃存放三个月,活性无明显改变。
使用方法:
以下举例为以人基因组DNA为模板,扩增1 kb的片段的PCR反应体系和反应条件,实际操作中应根据模板、引物结构和目的片段大小不同进行相应的改进和优化。
1、PCR反应体系 试剂 | 50μl反应体系 | 终浓度 |
2×Pfu MasterMix(With Dye) | 25μl | 1× |
Forward Primer,10μM | 2μl | 0.4μM |
Reverse Primer,10μM | 2μl | 0.4μM |
Template DNA | <0.5μg | <0.5μg/50μl |
ddH2O | up to 50μl | |
注意:用Pfu酶扩增时,引物的纯度要求较高,引物长度大于18个碱基,引物浓度请以终浓度0.1-1.0μM作为设定范围的参考。扩增效率不高的情况下,可提高引物的浓度;发生非特异性反应时,可降低引物浓度,由此优化反应体系。
2、PCR反应条件 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 94℃ | 2 min | |
变性 | 94℃ | 30 s | 25-35个循环 |
退火 | 55-65℃ | 30 s |
延伸 | 72℃ | 60 s |
终延伸 | 72℃ | 5 min | |
注意:
1)Pfu酶的热稳定性比Taq酶好,对于GC含量很高的模板,变性温度可以提高到98℃,对Pfu酶的活性无影响。
2)一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度Tm低5℃,无法得到理想的扩增效率时,适当降低退火温度;发生非特异性反应时,提高退火温度,由此优化反应条件。
3)Pfu酶具有3"-5"外切酶活性,所以Pfu酶扩增时延伸速度远比Taq酶低,延伸时间根据所扩增片段大小设定,本产品的扩增延伸速率为1 kb/min。
4)可根据扩增产物的下游应用设定循环数。如果循环次数太少,扩增量不足;如果循环次数太多,错配机率会增加,非特异性背景严重。所以在保证产物得率的前提下应尽量减少循环次数。
5)本产品具有3"-5"外切核酸酶活性,PCR产物为平端不能直接用于T/A克隆,如需进行T/A克隆则需要在其末端添加“A”或用平末端载体进行克隆。
储存条件:-20℃,避免反复冻融。
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温馨提示:不可用于临床ZL。